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Nombre De Pièces: | 5 trousses |
Prix: | Négociable |
Emballage Standard: | Emballage en couleur |
Période De Livraison: | 5 à 7 jours |
Méthode De Paiement: | T/T |
Capacité D'approvisionnement: | 100 kits par mois |
REAGENTMFuraltadone ((AMOZ) ELISA Test Kit fournit un immunoassay enzymatique compétitif pour l'analyse quantitative de la furaltadone dans le poisson, la crevette, la viande (poulet, bœuf, porc et héparine), les œufs, le miel.
Des méthodes d'extraction rapides (4 heures), de récupération élevée (80 à 105%) et rentables pour divers échantillons.
Haute sensibilité (0,05 ng/g ou ppb) et faible limite de détection (0,1 ng/g ou ppb) pour différents échantillons.
Une reproductibilité élevée.
Un test ELISA rapide (moins d'une heure quel que soit le nombre d'échantillons).
La méthode est basée sur un test ELISA colorimétrique compétitif.l' échantillon et l' anticorps AMOZ sont ajoutés avec l' anticorps secondaireSi le résidu d'AMOZ est présent dans l'échantillon, il va rivaliser pour l'anticorps AMOZ,empêchant ainsi l'anticorps de se lier à l'AMOZ-BSA attaché au puitsL'intensité de couleur obtenue, après ajout du substrat HRP (TMB), a une relation inverse avec la concentration de résidus d'AMOZ dans l'échantillon.
REAGENTMLe kit ELISA de Furaltadone (AMOZ) est capable de réaliser 96 déterminations ou de tester 42 échantillons en double (en supposant 12 puits pour les normes).Retournez les puits non utilisés dans le sac en feuille et recouvrez-les avec le sécheur fourni dans l'emballage d'origine.La durée de conservation est de 12 mois lorsque le kit est correctement conservé.
Contenu du kit |
Montant |
Réservation |
Plaque revêtue d'AMOZ |
1 plaque de 96 puits (8 puits x 12 bandes) |
2 à 8°C |
Les normes AMOZ: Contrôle négatif (tube à capuche blanche) 00,0 5 ng/ml (tube à capuche jaune) 00,15 ng/mL (tube à capuche orange) 00,45 ng/mL (tube à capuche rose) 1.35 ng/mL (tube à capuche violette) 40,05 ng/mL (tube à capuche bleue) 10 ng/mL (spiking, optionnel, tube à capuche rouge) |
1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml |
2 à 8°C
2 à 8°C |
AMOZ Anticorps (Anticorps n°1) |
4 ml |
|
Anticorps HRP-conjugués #2 |
6 ml |
2 à 8°C |
10X tampon d'extraction d'échantillon |
25 ml |
|
20X Solution de lavage |
28 ml |
|
Arrêtez le tampon |
20 ml |
|
Substrate TMB |
12 ml |
|
50 mM de 2-nitrobenzaldéhyde |
20,0 mL |
* Si vous ne prévoyez pas d'utiliser le kit pendant plus d'un mois, conservez les anticorps antibody #1 et antibody HRP-conjugué #2 à -20°C ou dans un congélateur.
Sensitivité (limite de détection)
Type de l'échantillon |
Limites de détection(ng/g ou ppb) |
Poissons/champignons |
0.1 |
Viande (poulet, bœuf, porc et foie) |
0.1 |
Puissance des œufs |
0.1 |
Chérie! |
0.1 |
Analyte |
Réactivité croisée(en %) |
Je vous en prie. |
100 |
La zone d'exclusion |
Le taux de dépôt04 |
AHD |
> 0.06 |
Le SEM |
> 0.05 |
1.lecteur de plaque microtiter (450 nm)
2- Un incubateur.
3.Mélangeur de tissus (p. ex. homogénéiseur Omni TissueMaster)
4Évaporateur rotatif ou gaz d'azote
5.Mélangeur de vortex (par exemple, mélangeur de vortex Gneie de VWR)
6.10, 20, 100 et 1000 ml de pipettes
7.Pipette multicanal: 50 à 300 ml (facultatif)
8Acétate d'éthyle
9.0.1 M K2HPO4
10.n-hexane (ou n-heptane)
11.1M NaOH
12.1M HCL
Les normes contiennent de la furaltadone.
Ne pas utiliser après la date de péremption.
Ne mélangez pas les réactifs provenant de différents kits ou lots, sauf pour les composants ayant le même numéro de pièce dans leur date de péremption.
Essayez de maintenir une température de laboratoire de 20 °C à 25 °C (68 °F à 77 °F). Évitez d'exécuter des essais sous ou près des conduits d'aération, car cela peut provoquer un refroidissement, une chauffage et/ou une évaporation excessifs.ne pas effectuer les essais en plein soleil, car cela peut provoquer une chaleur et une évaporation excessives.Il convient d'éviter les bancs froids en plaçant plusieurs couches de serviettes en papier ou d'autres matériaux isolants sous les plaques d'essai pendant l'incubation..
Veillez à n'utiliser que de l'eau distillée ou désionisée, car la qualité de l'eau est très importante.
Lorsque des échantillons ou des réactifs sont mis en pipette dans une plaque de microtiter vide, les extrémités de la pipette sont placées dans le coin inférieur du puits, en contact avec le plastique.
L'incubation des plaques d'essai doit être chronométrée le plus précisément possible. Soyez cohérent lors de l'ajout de normes à la plaque d'essai. Ajoutez d'abord vos normes, puis vos échantillons.
Ajouter des normes à la plaque uniquement dans l'ordre de faible concentration à haute concentration, car cela minimisera le risque de compromettre la courbe standard.
Les plaques doivent toujours être réfrigérées dans des sacs scellés avec un sécheur pour maintenir leur stabilité.Prévenir la formation de condensation sur les plaques en leur permettant de s' équilibrer à température ambiante (20°C / 68°F) pendant l' emballage.
Assurez-vous que les échantillons sont correctement conservés.En général, les échantillons doivent être réfrigérés à 2 à 4°C pendant au plus 1 à 2 jours.Congelez les échantillons à au moins -20°C s'ils doivent être conservés plus longtemps.Les échantillons surgelés peuvent être décongelés à température ambiante (20°C / 68°F) ou au réfrigérateur avant utilisation..
Mélanger 1 g d'échantillon homogénéisé avec 0,5 ml de tampon d'extraction d'échantillon 1X, 3,5 ml d'eau distillée, 0,5 ml de 1 M HCl et 20 ml de 50 mM de 2-nitrobenzaldéhyde par vortex pendant 30 secondes.
Incubation à 50°C - 55°C pendant 3 heures. Vortex de l'échantillon pendant 5 secondes toutes les heures pendant l'incubation.
Ajouter 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de 1 M NaOH et 6 ml d'acétate d'éthyle, tourbillonner pendant 2 minutes.
Centrifugez à 4 000 x g pendant 5 minutes à température ambiante (20 °C à 25 °C).
Transférer 3 ml de l'acétate d'éthyle supernatant (correspondant à 0,5 g de l'échantillon d'origine) dans un nouveau flacon (F Évitez la couche aqueuse inférieure!centrifugez l'acétate d'éthyle extrait pendant 5 minutes à 4En cas d'émulsion et si la couche supérieure d'acétate d'éthyle est inférieure à 3 ml, incuber l'échantillon dans un bain d'eau pendant 3 minutes à 85 °C.Utiliser un évaporateur rotatif pour sécher l'échantillon dans un bain d'eau à 60 à 70 °C sous pression réduiteAlternativement, l'échantillon peut être séché en soufflant de l'azote dans un bain d'eau à 60 à 70 °C.
Le résidu séché est dissous dans 1 ml de n-hexane (ou n-heptane).
Ajouter 1 ml de1XPuffer d'extraction d'échantillon, tourbillonnez l'échantillon pendant 2 minutes.
Centrifugez l'échantillon à 4 000 g pendant 10 minutes à température ambiante (20 °C / 68 °F).
Utiliser 50 ml de la couche aqueuse inférieure par puits pour l'analyse.
Nom de l'organisme:Facteur de dilution: 2. Pour éviter un fond élevé, il est recommandé de préparer en parallèle un échantillon vierge de solvant.en commençant par la réduction de 3 ml d'acétate d'éthyle à la sécheresse et en poursuivant par la procédure d'extraction au repos. Soustraire le résultat du contrôle par solvant des résultats de l'échantillon.
Mélanger 1 g d'échantillon homogénéisé avec 0,5 ml de tampon d'extraction d'échantillon 1X, 3,5 ml d'eau distillée, 0,5 ml de 1 M HCl et 20 ml de 50 mM de 2-nitrobenzaldéhyde en tourbillon pendant 30 secondes.
Incubation à 50°C-55°C pendant 3 heures. Vortex de l'échantillon pendant 5 secondes toutes les heures pendant l'incubation.
Ajouter 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de 1 M NaOH et 6 ml d'acétate d'éthyle, tourbillon pendant 5 minutes.
Centrifugez à 4 000 x g pendant 5 minutes à température ambiante (20 °C / 68 °F).
Transférer 3,0 ml de l'acétate d'éthyle supernatant (correspondant à 0,5 g de l'échantillon d'œuf original) dans un nouveau flacon (F Évitez la couche aqueuse inférieure!centrifugez l'acétate d'éthyle extrait pendant 5 minutes à 4Utilisez un évaporateur rotatif pour sécher l'échantillon dans un bain d'eau de 60 à 70 °C sous pression réduite.l'échantillon peut être séché en soufflant de l'azote dans un bain d'eau à 60 à 70 °C.
Le résidu séché est dissous dans 1 ml de n-hexane (ou n-heptane).
Ajouter 1 ml de1XPuffer d'extraction d'échantillon et tourbillonner l'échantillon pendant 2 minutes.
Centrifugez l'échantillon à 4 000 g pendant 10 minutes à température ambiante (20 °C / 68 °F).
Utiliser 50 ml de la couche aqueuse inférieure par puits pour l'analyse.
Nom de l'entreprise: Facteur de dilution: 2. Pour éviter un fond élevé, il est recommandé de préparer en parallèle un échantillon blanc de solvant,en commençant par la réduction de 3 ml d'acétate d'éthyle à la sécheresse et en poursuivant la procédure de repos. Soustraire le résultat du contrôle par solvant des résultats de l'échantillon.
Mélanger 1 g d'échantillon d'œuf avec 0,5 ml de tampon d'extraction d'échantillon 1X, 3,5 ml d'eau distillée, 0,5 ml de 1 M HCl et 20 ml de 50 mM de 2-nitrobenzaldéhyde en tourbillonnant pendant 2 minutes.
Incubation à 50°C - 55°C pendant 3 heures. Vortex de l'échantillon pendant 5 secondes toutes les heures pendant l'incubation.
Ajouter 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de 1 M NaOH et 6 ml d'acétate d'éthyle, tourbillonner 5 minutes à vitesse maximale.
Centrifugez à 4000 x g pendant 10 minutes à température ambiante (20 25 °C / 68 77 °F).
Transférer 3,0 ml de l'acétate d'éthyle supernatant (correspondant à 0,5 g de l'échantillon de miel original) dans un nouveau flacon (F Évitez la couche aqueuse inférieure!centrifugez l'acétate d'éthyle extrait pendant 5 minutes à 4Utilisez un évaporateur rotatif pour sécher l'échantillon dans un bain d'eau de 60 à 70 °C sous pression réduite.l'échantillon peut être séché en soufflant de l'azote dans un bain d'eau à 60 à 70 °C.
Le résidu séché est dissous dans 1 ml de n-hexane (ou n-heptane).
Ajouter 1 ml de1XPuffer d'extraction d'échantillon et vortex pendant 2 minutes.
Centrifugez l'échantillon à 4 000 g pendant 10 minutes à température ambiante (20 °C / 68 °F).
Utiliser 50 ml de la couche aqueuse inférieure pour l'analyse.
Nom de l'entreprise: Facteur de dilution: 2. (1) Après évaporation de l'extrait d'acétate d'éthyle, le résidu obtenu n'est pas complètement dissous.(2) Pour cette préparation, nous recommandons d'utiliser 0,5 ng/g ou ppb standard comme valeur limite pour les échantillons positifs puisque les échantillons négatifs pourraient présenter des effets de fond considérables (dans certains cas entre les normes 0.05 ng/g et 00,15 ng/g).
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Nombre De Pièces: | 5 trousses |
Prix: | Négociable |
Emballage Standard: | Emballage en couleur |
Période De Livraison: | 5 à 7 jours |
Méthode De Paiement: | T/T |
Capacité D'approvisionnement: | 100 kits par mois |
REAGENTMFuraltadone ((AMOZ) ELISA Test Kit fournit un immunoassay enzymatique compétitif pour l'analyse quantitative de la furaltadone dans le poisson, la crevette, la viande (poulet, bœuf, porc et héparine), les œufs, le miel.
Des méthodes d'extraction rapides (4 heures), de récupération élevée (80 à 105%) et rentables pour divers échantillons.
Haute sensibilité (0,05 ng/g ou ppb) et faible limite de détection (0,1 ng/g ou ppb) pour différents échantillons.
Une reproductibilité élevée.
Un test ELISA rapide (moins d'une heure quel que soit le nombre d'échantillons).
La méthode est basée sur un test ELISA colorimétrique compétitif.l' échantillon et l' anticorps AMOZ sont ajoutés avec l' anticorps secondaireSi le résidu d'AMOZ est présent dans l'échantillon, il va rivaliser pour l'anticorps AMOZ,empêchant ainsi l'anticorps de se lier à l'AMOZ-BSA attaché au puitsL'intensité de couleur obtenue, après ajout du substrat HRP (TMB), a une relation inverse avec la concentration de résidus d'AMOZ dans l'échantillon.
REAGENTMLe kit ELISA de Furaltadone (AMOZ) est capable de réaliser 96 déterminations ou de tester 42 échantillons en double (en supposant 12 puits pour les normes).Retournez les puits non utilisés dans le sac en feuille et recouvrez-les avec le sécheur fourni dans l'emballage d'origine.La durée de conservation est de 12 mois lorsque le kit est correctement conservé.
Contenu du kit |
Montant |
Réservation |
Plaque revêtue d'AMOZ |
1 plaque de 96 puits (8 puits x 12 bandes) |
2 à 8°C |
Les normes AMOZ: Contrôle négatif (tube à capuche blanche) 00,0 5 ng/ml (tube à capuche jaune) 00,15 ng/mL (tube à capuche orange) 00,45 ng/mL (tube à capuche rose) 1.35 ng/mL (tube à capuche violette) 40,05 ng/mL (tube à capuche bleue) 10 ng/mL (spiking, optionnel, tube à capuche rouge) |
1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml 1.5 ml |
2 à 8°C
2 à 8°C |
AMOZ Anticorps (Anticorps n°1) |
4 ml |
|
Anticorps HRP-conjugués #2 |
6 ml |
2 à 8°C |
10X tampon d'extraction d'échantillon |
25 ml |
|
20X Solution de lavage |
28 ml |
|
Arrêtez le tampon |
20 ml |
|
Substrate TMB |
12 ml |
|
50 mM de 2-nitrobenzaldéhyde |
20,0 mL |
* Si vous ne prévoyez pas d'utiliser le kit pendant plus d'un mois, conservez les anticorps antibody #1 et antibody HRP-conjugué #2 à -20°C ou dans un congélateur.
Sensitivité (limite de détection)
Type de l'échantillon |
Limites de détection(ng/g ou ppb) |
Poissons/champignons |
0.1 |
Viande (poulet, bœuf, porc et foie) |
0.1 |
Puissance des œufs |
0.1 |
Chérie! |
0.1 |
Analyte |
Réactivité croisée(en %) |
Je vous en prie. |
100 |
La zone d'exclusion |
Le taux de dépôt04 |
AHD |
> 0.06 |
Le SEM |
> 0.05 |
1.lecteur de plaque microtiter (450 nm)
2- Un incubateur.
3.Mélangeur de tissus (p. ex. homogénéiseur Omni TissueMaster)
4Évaporateur rotatif ou gaz d'azote
5.Mélangeur de vortex (par exemple, mélangeur de vortex Gneie de VWR)
6.10, 20, 100 et 1000 ml de pipettes
7.Pipette multicanal: 50 à 300 ml (facultatif)
8Acétate d'éthyle
9.0.1 M K2HPO4
10.n-hexane (ou n-heptane)
11.1M NaOH
12.1M HCL
Les normes contiennent de la furaltadone.
Ne pas utiliser après la date de péremption.
Ne mélangez pas les réactifs provenant de différents kits ou lots, sauf pour les composants ayant le même numéro de pièce dans leur date de péremption.
Essayez de maintenir une température de laboratoire de 20 °C à 25 °C (68 °F à 77 °F). Évitez d'exécuter des essais sous ou près des conduits d'aération, car cela peut provoquer un refroidissement, une chauffage et/ou une évaporation excessifs.ne pas effectuer les essais en plein soleil, car cela peut provoquer une chaleur et une évaporation excessives.Il convient d'éviter les bancs froids en plaçant plusieurs couches de serviettes en papier ou d'autres matériaux isolants sous les plaques d'essai pendant l'incubation..
Veillez à n'utiliser que de l'eau distillée ou désionisée, car la qualité de l'eau est très importante.
Lorsque des échantillons ou des réactifs sont mis en pipette dans une plaque de microtiter vide, les extrémités de la pipette sont placées dans le coin inférieur du puits, en contact avec le plastique.
L'incubation des plaques d'essai doit être chronométrée le plus précisément possible. Soyez cohérent lors de l'ajout de normes à la plaque d'essai. Ajoutez d'abord vos normes, puis vos échantillons.
Ajouter des normes à la plaque uniquement dans l'ordre de faible concentration à haute concentration, car cela minimisera le risque de compromettre la courbe standard.
Les plaques doivent toujours être réfrigérées dans des sacs scellés avec un sécheur pour maintenir leur stabilité.Prévenir la formation de condensation sur les plaques en leur permettant de s' équilibrer à température ambiante (20°C / 68°F) pendant l' emballage.
Assurez-vous que les échantillons sont correctement conservés.En général, les échantillons doivent être réfrigérés à 2 à 4°C pendant au plus 1 à 2 jours.Congelez les échantillons à au moins -20°C s'ils doivent être conservés plus longtemps.Les échantillons surgelés peuvent être décongelés à température ambiante (20°C / 68°F) ou au réfrigérateur avant utilisation..
Mélanger 1 g d'échantillon homogénéisé avec 0,5 ml de tampon d'extraction d'échantillon 1X, 3,5 ml d'eau distillée, 0,5 ml de 1 M HCl et 20 ml de 50 mM de 2-nitrobenzaldéhyde par vortex pendant 30 secondes.
Incubation à 50°C - 55°C pendant 3 heures. Vortex de l'échantillon pendant 5 secondes toutes les heures pendant l'incubation.
Ajouter 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de 1 M NaOH et 6 ml d'acétate d'éthyle, tourbillonner pendant 2 minutes.
Centrifugez à 4 000 x g pendant 5 minutes à température ambiante (20 °C à 25 °C).
Transférer 3 ml de l'acétate d'éthyle supernatant (correspondant à 0,5 g de l'échantillon d'origine) dans un nouveau flacon (F Évitez la couche aqueuse inférieure!centrifugez l'acétate d'éthyle extrait pendant 5 minutes à 4En cas d'émulsion et si la couche supérieure d'acétate d'éthyle est inférieure à 3 ml, incuber l'échantillon dans un bain d'eau pendant 3 minutes à 85 °C.Utiliser un évaporateur rotatif pour sécher l'échantillon dans un bain d'eau à 60 à 70 °C sous pression réduiteAlternativement, l'échantillon peut être séché en soufflant de l'azote dans un bain d'eau à 60 à 70 °C.
Le résidu séché est dissous dans 1 ml de n-hexane (ou n-heptane).
Ajouter 1 ml de1XPuffer d'extraction d'échantillon, tourbillonnez l'échantillon pendant 2 minutes.
Centrifugez l'échantillon à 4 000 g pendant 10 minutes à température ambiante (20 °C / 68 °F).
Utiliser 50 ml de la couche aqueuse inférieure par puits pour l'analyse.
Nom de l'organisme:Facteur de dilution: 2. Pour éviter un fond élevé, il est recommandé de préparer en parallèle un échantillon vierge de solvant.en commençant par la réduction de 3 ml d'acétate d'éthyle à la sécheresse et en poursuivant par la procédure d'extraction au repos. Soustraire le résultat du contrôle par solvant des résultats de l'échantillon.
Mélanger 1 g d'échantillon homogénéisé avec 0,5 ml de tampon d'extraction d'échantillon 1X, 3,5 ml d'eau distillée, 0,5 ml de 1 M HCl et 20 ml de 50 mM de 2-nitrobenzaldéhyde en tourbillon pendant 30 secondes.
Incubation à 50°C-55°C pendant 3 heures. Vortex de l'échantillon pendant 5 secondes toutes les heures pendant l'incubation.
Ajouter 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de 1 M NaOH et 6 ml d'acétate d'éthyle, tourbillon pendant 5 minutes.
Centrifugez à 4 000 x g pendant 5 minutes à température ambiante (20 °C / 68 °F).
Transférer 3,0 ml de l'acétate d'éthyle supernatant (correspondant à 0,5 g de l'échantillon d'œuf original) dans un nouveau flacon (F Évitez la couche aqueuse inférieure!centrifugez l'acétate d'éthyle extrait pendant 5 minutes à 4Utilisez un évaporateur rotatif pour sécher l'échantillon dans un bain d'eau de 60 à 70 °C sous pression réduite.l'échantillon peut être séché en soufflant de l'azote dans un bain d'eau à 60 à 70 °C.
Le résidu séché est dissous dans 1 ml de n-hexane (ou n-heptane).
Ajouter 1 ml de1XPuffer d'extraction d'échantillon et tourbillonner l'échantillon pendant 2 minutes.
Centrifugez l'échantillon à 4 000 g pendant 10 minutes à température ambiante (20 °C / 68 °F).
Utiliser 50 ml de la couche aqueuse inférieure par puits pour l'analyse.
Nom de l'entreprise: Facteur de dilution: 2. Pour éviter un fond élevé, il est recommandé de préparer en parallèle un échantillon blanc de solvant,en commençant par la réduction de 3 ml d'acétate d'éthyle à la sécheresse et en poursuivant la procédure de repos. Soustraire le résultat du contrôle par solvant des résultats de l'échantillon.
Mélanger 1 g d'échantillon d'œuf avec 0,5 ml de tampon d'extraction d'échantillon 1X, 3,5 ml d'eau distillée, 0,5 ml de 1 M HCl et 20 ml de 50 mM de 2-nitrobenzaldéhyde en tourbillonnant pendant 2 minutes.
Incubation à 50°C - 55°C pendant 3 heures. Vortex de l'échantillon pendant 5 secondes toutes les heures pendant l'incubation.
Ajouter 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de 1 M NaOH et 6 ml d'acétate d'éthyle, tourbillonner 5 minutes à vitesse maximale.
Centrifugez à 4000 x g pendant 10 minutes à température ambiante (20 25 °C / 68 77 °F).
Transférer 3,0 ml de l'acétate d'éthyle supernatant (correspondant à 0,5 g de l'échantillon de miel original) dans un nouveau flacon (F Évitez la couche aqueuse inférieure!centrifugez l'acétate d'éthyle extrait pendant 5 minutes à 4Utilisez un évaporateur rotatif pour sécher l'échantillon dans un bain d'eau de 60 à 70 °C sous pression réduite.l'échantillon peut être séché en soufflant de l'azote dans un bain d'eau à 60 à 70 °C.
Le résidu séché est dissous dans 1 ml de n-hexane (ou n-heptane).
Ajouter 1 ml de1XPuffer d'extraction d'échantillon et vortex pendant 2 minutes.
Centrifugez l'échantillon à 4 000 g pendant 10 minutes à température ambiante (20 °C / 68 °F).
Utiliser 50 ml de la couche aqueuse inférieure pour l'analyse.
Nom de l'entreprise: Facteur de dilution: 2. (1) Après évaporation de l'extrait d'acétate d'éthyle, le résidu obtenu n'est pas complètement dissous.(2) Pour cette préparation, nous recommandons d'utiliser 0,5 ng/g ou ppb standard comme valeur limite pour les échantillons positifs puisque les échantillons négatifs pourraient présenter des effets de fond considérables (dans certains cas entre les normes 0.05 ng/g et 00,15 ng/g).